Вестник МГОУ. Серия: Географическая среда и живые системы / 2017 №3
Название статьи | ВЛИЯНИЕ НАНОЧАСТИЦ ОКСИДА МЕДИ (II) И ИОНА CU НА ХОЛИНЭСТЕРАЗНУЮ АКТИВНОСТЬ ГЕМОЛИМФЫ МИДИИ ГРЕЯ CRENOMYTILUS GRAYANUS (DUNKER, 1853) (BIVALVIA: MYTILIDAE) В УСЛОВИЯХ ЛАБОРАТОРНОГО ЭКСПЕРИМЕНТА |
Авторы | Ковалев Н.Н., Михеев Е.В., Кавун В.Я. |
Серия | Географическая среда и живые системы |
Страницы | 14 - 26 |
Аннотация | Проведено исследование влияния содержания наночастиц оксида меди (НЧ CuO) и ионов Cu2+ в среде, на их накопление в гемолимфе мидии Crenomytilus grayanus. Оценено влияние наночастиц оксида меди и ионной формы металла (Cu2+) на активность холинэстеразы в гемолимфе мидии. Показано разнонаправленное воздействие наночастиц CuO и иона Cu2+ на содержание меди и активность холинэстеразы в гемолимфе мидии. На начальном этапе эксперимента в случае ионной формы меди холинэстеразная активность снижалась, в случае наночастиц меди активность увеличивалась. На завершающей стадии эксперимента наблюдалась обратная зависимость для рассмотренных форм меди. |
Ключевые слова | холинэстераза, гемолимфа, наночастицы, оксид меди |
Индекс УДК | 594. 124 |
DOI | 10.18384/2310-7189-2017-3-14-26 |
Список цитируемой литературы | 1. Кавун В.Я., Шулькин В.М. Изменение микроэлементного состава органов и тканей двустворчатого моллюска Crenomytilus grayanus при акклиматизации в биотопе, хронически загрязненном тяжелыми металлами // Биология моря. 2005. Т. 31. № 2. С. 123-128. 2. Ковалев Н.Н. Адаптивная роль холинэстеразы гемолимфы двустворчатых моллюсков // Известия ТИНРО. 2003. Т. 133. С. 97-103. 3. Ковалев Н.Н., Кавун В.Я., Костецкий Э.Я., Михеев Е.В., Подгурская О.В. Холинэстеразная активность гемолимфы мидии Crenomytilus grayanus (Dunker, 1853) (Bivalvia: Mytilidae), обитающей в импактных природных и антропогенных условиях // Биология. моря. 2016. Т. 42. № 1. С. 41-47. 4. Подгурская О.В., Кавун В.Я. Оценка адаптационно-защитного потенциала двустворчатых моллюсков Modiolus modiolus (Linnaeus, 1758) и Crenomytilus grayanus (Dunker, 1853) в условиях повышенного содержания тяжелых металлов в среде // Биология. моря. 2012. Т. 38. № 2. С. 174-182. 5. Фадеева Ю.И., Слободскова В.В., Кавун В.Я., Челомин В.П. Влияние наночастиц оксида меди (II) и иона Cu на образование продуктов перекисного окисления липидов в жабрах мидии Грея Crenomytilus grayanus (Dunker, 1853) (Bivalvia: Mytilidae) в условиях лабораторного эксперимента // Вестник Московского государственного областного университета. Серия: Естественные науки. 2016. № 3. С. 74-83. 6. Фадеева Ю.И., Кавун В.Я., Слободскова В.В., Челомин В.П. Влияние оксида меди (II) и иона Cu на изменение микроэлементного состава органов мидии Грея Crenomytilus grayanus (Dunker, 1853) (Bivalvia: Mytilidae) в условиях лабораторного и натурного экспериментов // Вестник Московского государственного областного университета.Серия: Естественные науки. 2016. № 3. С. 84-97. 7. Amelia M., Lincheneau C., Silvi S., Credi A. Electrochemical properties of CdSe and CdTe quantum dots // Chem. Soc. Rev. 2012.Vol. 41, no 17. P. 5728-5743. 8. Belcheva N.N., Zakhartsev M.V., Dovzhenko N.V., Zhukovskaya A.F., Kavun V.Ya., Chelomin V.P. Anthropogenic pollution stimulates oxidative stress in soft tissues of mussel Crenomytilus grayanus (Dunker, 1853) // Ocean Sci. J. 2011. Vol. 46, no 2. Р. 85-94. 9. Canesi L., Ciacci C., Fabbri R. [еt. al]. Bivalve mollusks as a unique target group for nanotoxity // Mar. Environ. Res. 2012. Vol. 76. P. 16-21. 10. Chang Y.N., Zhang M., Lin X., Zhang J., Gengmei X. The Toxic Effects and Mechanisms of CuO and ZnO Nanoparticles // Materials. 2012. Vol. 5. P. 2850-2871. 11. Ellman G.L., Courtney K.D., Andres V. Jr., Featherstone R.M. A new and rapid colorimetric determination of acetylcholinesterase activity // Biochem. Pharmacol. 1961. Vol. 7, no 1. Р. 88-95. 12. Federici G., Shaw B.J., Handy R.D. Toxicity of titanium dioxide nanoparticles rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): Gill injury, oxidative stress, and other physiological effects // Aquat. Toxicol. 2007. Vol. 87. P. 415-430. 13. Gomes T., Pinheiro J.P., Cancio I. et al. Effects of copper nanoparticles exposure in the mussel Mytilus galloprovincialis // Environ. Sci. Technol. 2011. Vol. 45, no. 21. P. 9356-9362. 14. Gorbi S., Lamberti C.V., Notti A. et al. An ecotoxicological protocol with caget mussels, Mytilus galloprovincialis, for monitoring the impact of an offshore platform in the Adriatic Sea // Mar. Environ. Res. 2008. Vol. 65, no. 1. P. 34-49. 15. Joh D.Y.; Kinder J.; Herman L.H.; Ju S.Y.; Segal M.A.; Johnson J.N.; Chan G. K.L.; Park J. Single-walled carbon nanotubes as excitonic optical wires // Nat. Nanotechol. 2011. Vol. 6. P. 51-56. 16. Kopecka-Pilarczyk J., In vitro effects of pesticides and metals on the activity of acetylcholinesterase (AChE) from different tissues of the blue mussel, Mytilus trossulus L. // Journal of Environmental Science and Health. Part B. 2010. Vol. 45. P. 46-56. 17. Laurent S.; Forge D.; Port M.; Roch A.; Robic C.; van der Elst L.; Muller R.N. Magnetic iron oxide nanoparticles: synthesis, stabilization, vectorization, physicochemical characterizations, and biological applications // Chem. Rev. 2008. Vol. 108. P. 2064-2110. 18. Lopez, J.L. Role of proteomics in taxonomy: the Mytilus complex as a model of study // J.Chromatogr. 2005. Vol. 815. P. 261-274. 19. Lowry O., Rosenbrougt N., Parr A., Randall R. Protein measurement with the Folinphenol reagent // J. Biol. Chem. 1951. Vol. 193, no 1. P. 265-276. 20. Moore M.N. Do nanoparticles present ecotoxiclological risks for the health of the aquatic environment? // Environ. Int. 2006. Vol. 32. P. 967-976. 21. Nations S., Wages M., Canas J.E., Maul J., Theodorakis C., Cobb G.P. Acute effects of Fe2O3, TiO2, ZnO and CuO nanomaterials on Xenopus laevis // Chemosphere.2011. Vol. 83. P. 1053-1061. 22. Shulkin V.M., Presley B.J., Kavun V.Ya. Metal concentration in mussel Crenomytilus grayanus and oyster Crassostera gigas in relation to contamination of ambient sediments // Environ. Int. 2003. Vol. 29, no. 4. P. 493-502. 23. Tang F., Li L., Chen D. Mesoporous silica nanoparticles: Synthesis, biocompatibility and drug delivery // Adv. Mater. 2012. Vol. 24. P. 1504-1534. 24. Thompson E.L.,Taylor D.A., Nair S.V., Birch G., Haynes P.A., Raftos D.A. Proteomic discovery of biomarkers of metal contamination in Sydney Rock oysters (Saccostrea glomerata) // Aquat. Toxicol. 2012. Vol. 109. P. 202-212. 25. Tsangaris C., Kormas K., Strogyloudi E. [et al]. Multiple biomarkers of pollution effects in caged mussels on the Greek coastline // Comp. Biochem. Physiol. C: Toxicol. Pharmacol. 2010. Vol. 151, no. 3. P. 369-378. 26. Yan L., Zheng Y.B., Zhao F., Li S., Gao X., Xu B., Weiss P.S., Zhao Y. Chemistry and physics of a single atomic layer: Strategies and challenges for functionalization of graphene and graphene-based materials // Chem. Soc. Rev. 2012. Vol. 41. P. 97-114. 27. Wang Z., Li N., Zhao J. [еt. al]. CuO Nanoparticles Interaction with Human Epithelial Cells: Cellular Uptake, Location, Export, and Genotoxicology // Chem. Res. Toxicol. 2012. Vol. 25. P. 1512-1521. |
Полный текст статьи | |
Кол-во скачиваний | 10 |

